* 加Buffer S3 后蓝色会消失,充分混匀以保证悬浮物中蓝色均消失。
6. 过滤 将上清全部转入过滤柱,一般可以靠重力过滤,也可适当3000×g 离心min,。
7. 去内毒素
a..将上述操作的上清液体转移另一离心管中(忌取到沉淀),加10ml 去内毒素S4,振荡混匀,
b.不时振荡数次每次30秒。
c. 10,000 rpm,30℃离心5 min。
d. 溶液分为两相。上层水相含DNA,下层油状相含内毒素。
8. 柱结合.将含DNA的上层水相转移到吸附柱Spin Column中,弃层油状相。宁肯少提上层水相,也不要不要吸到中间层。一般一次抽提就可以符合标准;也可以根据需要重复抽提2次,即重复步骤a-d两次
10,000×g 离心2 min,弃滤液。如过滤不完全,可以适当延长离心时间。
9. 漂洗 将13ml的漂洗缓冲液 加入吸附柱中,10,000×g 离心(4°C)2 min,弃滤液。
10. 再漂洗 将13ml的漂洗缓冲液 加入吸附柱中,10,000×g 离心(4°C)2 min,弃滤液。 空柱10,000×g 离心(4°C)2 min,除去残留乙醇。
11.
洗脱 将吸附柱置于洁净的50 ml 离心管中,在吸附柱的膜中央上加1.5 ~3.5ml Elution Buffer,室温 静置5 min。≥10,000×g 离心5 min 收集质粒DNA。
注意:Elution Buffer 组成为2.5mM Tris-HCI (pH8.5),不影响测序和酶切反应,把水或洗脱液加热于65℃使用时有利于提高洗脱液效率,如果提取的质粒>10kb,请将洗脱液预热至65℃,并适当延长洗脱时间。
质粒DNA浓度和纯度检测
OD260值为1,相当于50ug/ml的双链DNA。也可以通过DNA Marker通过琼脂糖凝胶电泳半定量。
OD260/ OD280比值一般为1.7-1.8,如果洗脱时不使用缓冲液,而使用去离子水,由于受PH值和离子浓度的影响,比值会偏低。
超纯质粒DNA大量提取试剂盒
(去内毒素、去蛋白)
试剂盒内容 |
10 TESTS
Cat:FP093 |
50 TESTS
Cat:FP094 |
RNaseA (10mg/ml) |
300ul×5 |
300ul×25 |
溶液S1 Resuspension Buffer |
125ml |
125 ml×5 |
溶液S2 Lysis Buffer |
125ml |
125 ml×5 |
溶液S3 Neutralization Buffer |
145ml |
145 ml×5 |
去内毒素溶液S4 Solution S4 |
105ml |
105 ml×5 |
漂洗缓冲液Wash Buffer |
30 ml×2 |
30 ml×10 |
洗脱缓冲液 Elution Buffer |
15 ml×2 |
15ml×10 |
过滤柱 Filter Column |
10 |
50 |
吸附柱 Spin Column |
10 |
50 |
收集管 Collection Tube(50ml) |
20 |
100 |
说明书 Specification |
1 |
1 |
贮存条件:
室温,有效期一年。溶液S1加入RNase后2-8℃保存