贮存条件：
室温，有效期三年。
产品简介      
※  能从PCR或酶切缓冲液中回收小片段DNA，8bp 的DNA小片段回收率达60％。20-100bp可达80%。从凝胶回收小片段，请订购本公司产品Cat:FG110
※  采用进口硅胶膜和吸附树脂，最大吸附量为60ug，实验结果重复性好。

操作步骤：
1. 试验前准备及注意事项
 a.  结合树脂液Matrix  使用前请按标签加入无水乙醇并标示。如果片段过小，可以加入双倍的无水乙醇，以提高小片段的回收率。
 b.  溶液W2 使用前请按标签加入无水乙醇并标示；。
2. 吸附柱平衡柱  吸附柱加入200ul平衡液，室温4min, 12,000转/分 离心60秒，弃去离心管中液体。  
3.吸附 结合树脂液加入乙醇后，剧烈混匀。加7倍体积的结合树脂液乙醇溶液于样品中（7倍于样品），混匀。转入吸附柱中， 12,000转/分 离心30秒，弃去离心管中液体。（如果片段过小，结合树脂液可以加入双倍的无水乙醇，以提高小片段的回收率）。
4. 漂洗  将700μl的Buffer W2加入吸附柱Spin Column中，12000rpm离心30-60秒，弃滤液。
5. 再漂洗  将500μl的Buffer W2加入Spin Column中，12000rpm离心30-6秒，弃滤液。 空柱12000rpm再离心2分钟，除去残留乙醇。
6. 洗脱  将Spin Column按置于新的洁净的1.5ml的离心管上，在吸附柱Spin Column膜的中央处加入30-100μl的灭菌水(pH8.5)或洗脱缓冲液TE Buffer，室温静置1分钟，12000rpm离心1分钟洗脱DNA，可立即用于下游分子生物学实验或-20℃保存。
    注意：TE Buffer组成为2.5mM Tris-HCI (pH8.5),不影响测序和酶切反应..

把水或洗脱液加热于60℃使用时有利于提高洗脱液效率， 

DNA浓度和纯度检测
   OD260值为1，相当于50ug/ml的双链DNA。
   OD260/ OD280比值一般为1.7-1.8，如果洗脱时不使用缓冲液，而使用去离子水，由于受PH值和离子浓度的影响，比值会偏低。